1. 脂質體轉染法操作（以 6 孔板為例）

稀釋核酸和脂質體：分別取適量核酸和脂質體轉染試劑，用 Opti - MEM 培養基稀釋。一般而言，DNA 用量在 0.5 - 2μg，脂質體用量在 1 - 4μL，具體比例依試劑說明書和預實驗優化。例如，某實驗中，將 4μg 質粒用 200μl Opti - MEM 稀釋為 A 液，10μl lipo2000 用 200μl Opti - MEM 稀釋為 B 液。

混合孵育：將稀釋后的核酸和脂質體輕輕混合，室溫孵育 15 - 20 分鐘，促使核酸和脂質體形成復合物。如上述例子，將 B 液加入 A 液中，輕輕混勻，室溫靜置 20 分鐘。

更換培養基：吸除培養細胞的原培養基，用無血清培養基或 Opti - MEM 培養基輕柔洗滌細胞 1 - 2 次，然后添加適量無血清培養基。

加入轉染復合物：將孵育好的核酸 - 脂質體復合物緩慢加入培養孔，輕輕晃動培養板，使復合物均勻分布于細胞表面。

培養：將細胞置于 37℃、5% CO?培養箱繼續培養，4 - 6 小時后更換為（血清）細胞培養基，維持細胞正常生長。

2. 電穿孔轉染法操作

細胞準備：收集對數生長期細胞，用 PBS 洗滌后，使用電轉緩沖液重懸細胞，調整細胞密度至合適范圍。

電轉參數設置：根據細胞類型和轉染核酸類型，設置適宜的電脈沖參數，如電場強度、脈沖時間、脈沖次數等。例如，某些細胞可能需要 1000V/cm 電場強度，20ms 脈沖時間，1 次脈沖。

轉染操作：將核酸與細胞懸液混合，轉移至電轉杯中，進行電穿孔操作。電脈沖在細胞膜上形成電勢差，誘導產生暫時的小孔，使核酸進入細胞。

細胞恢復：電轉后，將細胞迅速轉移至含（血清）細胞培養基的培養器皿中，置于 37℃、5% CO?培養箱培養，使細胞恢復生長。

2. 檢測轉染效率

報告基因檢測：若使用帶有報告基因（如綠色熒光蛋白 GFP）的質粒進行轉染，可在轉染后 24 - 48 小時，通過熒光顯微鏡觀察報告基因表達情況，統計熒光陽性細胞比例，評估轉染效率。

分子生物學檢測：采用 qPCR、Western blot 等技術，檢測目的基因 mRNA 或蛋白表達水平變化，判斷轉染后基因的表達情況。例如，通過 qPCR 檢測轉染前后目的基因 mRNA 表達量，計算相對表達倍數。


ZETA LIFE 解決方案

ZETA LIFE 產品優勢

Zeta Life 公司專注于細胞培養產品研發生產，其轉染試劑等產品具備顯著優勢。產品在安全性上表現優秀，生產過程遵循嚴格標準，最大限度降低對細胞的毒性。生產流程自動化且經過驗證，符合 GMP 標準，保障了產品一致性，不同批次間產品質量穩定可靠。在性能方面，針對多種難轉染細胞系，如 RAW264.7 細胞，能有效提高轉染效率。

• RAW264.7 細胞轉染方案

• 質粒 DNA 準備：確保質粒 DNA 濃度為 700ng/ul，溶解于無菌雙蒸水或超純水，且無內毒素。可使用 QIAGEN 試劑盒去除內毒素。

• 細胞接種與轉染時機：先將細胞接種到細胞培養板，待細胞匯合度達 70% 左右時進行轉染。

• 復合物制備：將質粒 DNA 與 Zeta Life 公司 Advanced DNA RNA 轉染試劑（貨號 AD600150）按照 1:1（如 12ug:12ul）比例直接混合，用移液器吹吸 10 - 15 次混勻，室溫靜止 10 - 15 分鐘。

• 轉染操作：將復合物加入含（血清）細胞培養基的細胞培養板，輕輕混勻，放入培養箱繼續培養。不建議將復合物加入無血清培養基。

• 后續培養與檢測：轉染 24 小時后對細胞正常換液，質粒 DNA 轉染 48 小時后通過熒光檢測轉染效率。

• 其他細胞系轉染參考：對于不同細胞系，Zeta Life 產品可依據細胞特性，在核酸與轉染試劑比例、細胞接種密度、轉染時間等方面進行優化調整。例如，對于某些生長緩慢的原代細胞，可適當降低細胞接種密度，延長轉染時間，同時調整核酸與轉染試劑比例，以達到最佳轉染效果。在進行正式實驗前，建議開展預實驗，摸索適合特定細胞系的轉染條件。