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    如何從肝臟組織中制備細胞核?

    發(fā)布時間: 2021-11-17  點擊次數: 1952次

    材料與儀器

    大鼠
    裂解緩沖液 濃蔗糖溶液
    超速離心機 組織研磨器

    步驟

    1. 配制裂解緩沖液和濃蔗糖溶液(PMSF 在使用前添加),冰上放置。

    裂解緩沖液:

    0.25 mol/L 蔗糖網織紅細胞標準緩沖液(RSB)

    0.25 mol/L 蔗糖(超級純)

    10 mmol/ Tris-HCl (pH7.4)

    10 mmol/L NaCl

    3 mmol/L MgCl2

    1 mmol/L DTT

    0.5 mmol/L PMSF ( 用前從溶于乙醇的 100 mmol/L 貯存液中添加)

    濃蔗糖溶液:

    2 mol/L 蔗糖 RSB

    2 mol/L 蔗糖(超級純)

    10 mmol/L Tris-HCl ( pH 7.4)

    10 mmol/L NaCl

    3 mmol/L MgCl2

    1 mmol/L DTT

    0.5 mmol/L PMSF(用前從溶于乙醇的 100 mmol/L 貯存液中添加)

    2. 超速離心機(Beckman 的與 SW28 轉頭兼容型)和轉頭預冷到 4℃。

    3. 將組織研磨器(55 ml 的研磨腔; Thomas C 型腔和鋸齒型 Teflon 研杵,3431-E25)。量筒和燒杯放到冰上。

    4. 在一冰桶的冰上放一玻璃盤。

    5. 處死大鼠,取出肝臟,稱重。

    6. 在一玻璃盤上,用剃刀片快速去除結締組織,將 20 g 肝臟切成大約 1cm3 的小塊。

    7. 將肝臟碎塊裝入含 40 ml ( 兩倍體積)裂解緩沖液的冷的燒杯中。

    8. 將大約 30 ml 這種肝臟碎塊和緩沖液混合物倒入預冷的組織研磨器腔中。

    9. 將研杵連到推進器,便其滑到研磨腔中,直到觸到緩沖液面。然后握住研磨腔側面,打開推進器。逐漸加大推進器速度直至其最高速度,同時穩(wěn)定地將研磨腔沿轉動的研磨向上推進。當研杵到達研磨腔底部時,向下拉研磨腔直到所有勻漿都從研杵旁通過,然后再將研磨腔沿研杵推回。重復該過程 5~10 次后關掉推進器。

    10. 檢查細胞的裂解效率:

    (1) 將研磨腔放到冰上,取出 10 μl 裂解液,用 1 ml 裂解緩沖液稀釋。

    (2) 取 2.7 μl 稀釋后的裂解液加到載玻片上,再加上 2.7 μl 含 10 μg/ml Hoechst 染料(33258 10 mg/ml;Molecular Probes 或其他供應商)的裂解緩沖液,然后用一 18 mm2 的 1 號蓋玻片將液滴蓋上。

    (3) 比較亮的 DNA 染色的細胞核與同一視野的相圖。

    (4) 如果裂解細胞數少于 95%,加大推進器速度,繼續(xù)研磨樣品 5~10 次。

    11. 在一漏斗中裝入 4 層粗孔濾紙,放到一埋在冰浴中的量筒中,然后將勻漿倒進漏斗。

    12. 裂解剩余的肝臟碎塊,勻漿通過濾紙過濾與其余裂解物樣品混和,記錄得到的裂解物體積。

    13. 將裂解物體積除以 6,再從離心管體積(35~38 ml) 中減去該體積。即可確定加入 6 個離心管中的濃蔗糖溶液的體積。在 2 mol/L RSB 溶液中加 PMSF 至終濃度為 0.5 mmol/Lol/L。取適當體積(通常為 25~30 ml ) 加到離心管中,冰上放置。

    14. 向離心管中加入濃蔗糖溶液和等體積裂解物(通常 7~9 ml )。加裂解物時,應將移液管頭靠在離心管內壁上部使裂解物緩慢流下,這樣可減少裂解物與蔗糖溶液的混和。

    15. 將離心管放到預冷的轉桶中,對面的轉桶用裂解緩沖液平衡。

    16. 轉桶在 SW28 轉頭上裝好,放進預冷的離心機中,23000 g,4℃ 離心 30 分鐘。

    17. 吸出裂解物和蔗糖溶液,或者在一燒杯上將離心管倒轉將液體倒出。用一無絨紙巾清除內壁上的殘余物質,離心管放置于冰上。每管加入 2 ml 裂解緩沖液重新懸浮沉淀。

    18. 將沉淀的重懸浮液集中到一個 50 ml 的離心管(錐形或圓形底)中,加裂解緩沖液至 50 ml 終體積,在醫(yī)用離心管中 1500 g 離心 5 分鐘。

    19. 吸出上清,細胞核沉淀重懸浮于 1 ml 的裂解緩沖液中。取出少量樣品稀釋 100 倍后在血球計數板上計數細胞核數目。

    20. 用裂解緩沖液將樣品稀釋到期望濃度的兩倍,加入等體積甘油,放液氮中冷凍,-80℃ 保存。


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